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1. 實驗原理　

染色單體或染色體的無著絲點斷片，或因紡錘體受損而丟失的整個染色體，在細胞分裂后期，仍然在細胞質中。末期之后，單獨形成一個或幾個規(guī)則的次核，被包含在子細胞的胞質內，因比主核小，故稱為微核。大小應為主核的1/20～1/5。微核的折光率及細胞化學反應性質和主核一樣。微核率是和用藥的劑量或輻射累積效應呈正相關，所以可用簡易的、快速、靈敏的微核計數來代替繁雜的畸變染色體計數。Matter 和Schmid建立的微核測試是一種比較理想的方法，目前國內外已把微核測試用于輻射損傷、化學誘變劑、新藥試驗、染色體遺傳疾病及癌癥前期診斷等各方面。
嗜多染紅細胞是分裂后期的紅細胞由幼年發(fā)展為成熟紅細胞的一個階段，此時紅細胞的主核已排出，因胞質內含有核糖體，Giemsa染色呈灰藍色，成熟紅細胞的核糖體已消失，被染成淡橘紅色。骨髓中嗜多染紅細胞數量充足，由于無核，極易觀察到微核，因此，骨髓中嗜多染紅細胞成為微核試驗的首xuan細胞群。
 

2. 實驗對象　

成年健康小鼠，體重25g左右，雌雄均可。
 

3. 實驗 試劑 與器材
（1）器材：顯微鏡、低速離心機、電子天平、解剖器械（搪瓷解剖盤、探針、剪刀、鑷子）、注射器、試管、試管架、磨口 試劑 瓶、滴管、染色缸、洗耳球、量筒、清潔載玻片。
（2）試劑：0.9％生理鹽水、滅活的小牛血清、環(huán)磷酰胺、甲醇、PBS (pH6.8)、Giemsa染液、瑞氏染液。
 

4. 實驗方法與步驟
（1）環(huán)磷酰胺處理：取骨髓前24h先給小鼠腹腔注入環(huán)磷酰胺，注射劑量為100mg／kg動物體重。
（2）取骨髓：用損傷脊髓法處死小鼠，然后用剪刀剪開大腿上的皮膚和肌肉，取出大腿骨，用一小塊紗布來回搓干凈附在骨上的肌肉碎渣。剪掉股骨兩端膨大的關節(jié)頭，然后用注射器吸取5ml生理鹽水，插入股骨一端，將骨髓細胞沖洗至10ml的 離心管 中?？芍貜蜎_洗多次，直至骨髓腔呈白色為止。
（3）離心處理：將所獲得的細胞懸浮液以 1000rpm離心10min，吸去上清液，在沉淀物中加入2滴滅活的小牛 血清 ，制成細胞懸液。
（4）涂片：滴一滴懸液于載玻片一端，按常規(guī)方法涂片，在空氣中晾干。
（5）固定：將晾干的載玻片放入甲醇固定液中10min，取出晾干。
（6）染色：將制片平放在玻璃板上，用1∶9∶10的 Giemsa∶PBS∶瑞氏染液，染色15min，流水沖洗后晾干即可鏡檢。
（7）觀察：嗜多染紅細胞為年幼紅細胞，呈灰藍色，略大于紅細胞（紅色），微核多呈圓形和橢圓形，呈藍紫色或紫紅色（圖13-3）。

（8）結果分析：在顯微鏡下，每只小鼠骨髓涂片標本計數1000~2000個嗜多染紅細胞，包括其中出現(xiàn)微核的細胞數，將結果填入表內，并計算微核細胞率，觀察記錄結果（表13-2）。
按100mg/kg體重劑量給小鼠腹腔注射環(huán)磷酰胺，其嗜多染紅細胞微核率為（48.9±3.6）％。正常小鼠嗜多染紅細胞微核率為5‰以下，超過5‰為異常。